光穩定性（photostability）是熒光蛋白的一個重要特征。不過，它并不是一成不變的。研究人員發現，活細胞中綠色熒光蛋白（GFP）的光穩定性受到培養基組分以及細胞生長條件的影響。

由于熒光蛋白具有自發發出熒光的*能力，它們被廣泛應用于追蹤基因表達、標記感興趣的蛋白質，和實時監控細胞的生理狀況。野生型的GFP來自水母，盡管它發出絢麗的熒光，但在高等動物的細胞中，它的光譜并非*，且在37oC不能正確折疊。不過，這些問題在不久之后就通過突變解決了。增強型GFP（EGFP）可能就是人們zui熟知的突變體。

當然，除了熒光亮度，光穩定性也是熒光蛋白的一個重要特征。延時顯微鏡、3D圖像重建和單分子檢測等應用會受到光穩定性的影響。為了提高熒光蛋白的光穩定性，人們廣泛采用了定點突變和隨機誘變。zui近，研究人員也建議對成像培養基的組分進行優化。這是因為，GFP參與了光驅動的氧化還原反應，導致綠色到紅色的光轉換。因此，培養基組分對這些反應的抑制可增強綠色通道的光穩定性。

于是，研究人員測定細胞生長條件和培養基組分對EGFP光穩定性的影響，以便找出EGFP成像的*條件。他們利用EGFP-C1載體轉染了HEK293T細胞，并在轉染48小時后用Leica的AF6000 LX熒光顯微鏡成像。在成像之前，細胞培養基被更換成新鮮的DMEM或其他待研究的培養基（Ham's F12和RPMI 1640）。

他們發現，所有培養基都不影響EGFP在細胞中的初始亮度。在DMEM和RPMI 1640中表達的EGFP光穩定性幾乎相同，不過蕓香葉苷的添加使光穩定性增加了數倍。相比之下，Ham's F12培養基則帶來了非常高的EGFP光穩定性（DMEM的6-7倍），且幾乎不受蕓香葉苷的影響。

與DMEM相比，F12培養基的核黃素和吡哆醇的濃度降低，而這些維生素會明顯降低EGFP的光穩定性。同時，氧化還原活性化合物，如氰鈷胺（微生物B12）、*、次黃嘌呤和胸苷的濃度增高。研究人員進一步發現，這些化合物單獨添加到DMEM培養基中，對EGFP的光漂白沒有任何影響，不過它們的組合能使光穩定性提高2倍。

此外，他們還發現，EGFP的光漂白速率在很大程度上取決于細胞的生長條件，如細胞密度和血清的濃度。在2% FBS下檢測到zui低的光穩定性，而20% FBS下zui高。對于DMEM培養基，這兩者的差異在2.5-3倍。

基于這些研究，作者認為，熒光蛋白光穩定性的比較應盡可能在相同的條件下平行開展，而將不同論文中的數值拿來比較是非常不準確的。