質粒DNA的小量制備
細菌的收獲和裂解 收獲 堿裂解法 煮沸裂解 質粒DNA小量制備的問題與對策
質粒DNA的小量制備可采用下述的堿裂解法或煮沸法
（一）細菌的收獲和裂解
1．收獲 
1）將2ml含相應抗生素的ＬＢ加入到容量為15ml 并通氣良好（不蓋緊）的試管中，然后接入一單菌落，于30℃劇烈振搖下培養過夜。ELISA試劑盒 
2）將 1.5ml培養物倒入微量離心管中，用微量離心機于4℃以12000g離心30秒，將剩余的培養物貯存于4℃。 3）吸去培養液，使細菌沉淀盡可能干燥。除去上清的簡便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連輕緩抽吸，并用吸頭接觸液面。當液體從管中吸出時，盡可能使吸頭遠離細菌沉淀，然后繼續用吸頭通過抽真空除去附于管壁的液滴。

2．堿裂解法 
1）將細菌沉淀，所得重懸于100μl用冰預冷的溶液Ｉ中，劇烈振蕩。 
溶液Ｉ 
50mmol/L葡萄糖 
25mmol/L Tris．Cl(pH8.0) 
10mmol/LEDTA(pH8.0) 
溶液Ｉ可成批配制，每瓶約100ml,在10lbf/in2(6.895×104Pa) 高壓下蒸氣滅菌15分鐘，貯存于4℃。須確使細菌沉淀在溶液Ｉ中*分散，將兩個微量離心管的管底部互相接觸震蕩，可使沉淀迅速分散。

2）加200μl新配制的溶液Ⅱ。 
溶液Ⅱ 
0.2mol/L NaOH（臨用前用10mol/L貯存液現用現稀釋） 
1%SDS 
蓋緊管口，快速顛倒離心管5次，以混合內容物。應確保離心管的整個內表面 均與溶液Ⅱ接觸。不要振蕩，將離心管放置于冰上。 
3）加 150μl用冰預冷的溶液Ⅲ 
溶液Ⅲ 
5mol/Ｌ乙酸鉀 
60ml 冰乙酸 
11.5ml 水 28.5ml 
所配成的溶液對鉀是3mol/L，對乙酸根是5mol/L。ELISA試劑盒 
蓋緊管口，將管倒置后和地振蕩10秒鐘溶液Ⅲ在粘稠的細菌裂解物中分散均勻，之后 將管置于冰上3－5分鐘。 
4）用微量離心機于4℃12 000g離心5分種，將上清轉移到另一離心管中。 
5）可做可不做：加等量酚：氯念， 振蕩混勻， 用微量離心機于4 ℃以12000g離心 2分鐘，將上清轉移到另一良心管中。有些工作者認為不*酚：氯仿進行抽提，然而由于一些未知的原因，省略這一步，往往會得到可耐受限制酶切反應的 DNA。 
6）用2倍休積的乙醇于室溫沉淀雙錠DNA。振蕩混合， 于室溫放置2分鐘。 
7）用微量離心機于4℃以12 000g離心5分鐘。 
8）小心吸去上清液，將離心管倒置于一張紙巾上，以使所有液體流出。再將附于管壁的液滴除盡。除去上清的簡便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連，并用吸頭接觸液面。當液體從管中吸出時，盡量使吸頭遠離核酸沉淀，然后繼續用吸頭通過抽真空除去附于管壁的液滴。 
9）用1ml70%乙醇于4℃洗滌雙鏈DNA沉淀，按步驟8）所術方法去掉上清，在空氣中使核酸沉淀干燥10分鐘。

i.此法制備的高拷貝數質粒（如Ｘf3或pUC），其產量一般約為：每毫升原細菌培養物3－5μg。 
ii．如果要通過限制酶切割反應來分析DNA，可取1μl DNA溶液加到另一含8μl水的微量離心管內，加1μl 10×限制酶緩沖液和1單位所需限制酶， 在適宜溫育1－2小時。將剩余的DNA貯存于－20℃。 
iii.此方法按適當比例放大可適用于100ml細菌培養物：
3．煮沸裂解 
1）將細菌沉淀，所得重懸于350μlSTET中。 
STET
0.1mol/L NaCL
10mmol/L Tris.Cl(pH8.0) 
1mmol/L EDTA(pH8.0) 
5% Triton X-100 
2）加25μl新配制的*溶液[10mg/ml,用10mmol/L Tris.Cl(pH8.0)配制]，振蕩3秒鐘以混勻之。如果溶淮中pH低于8.0，*就不能有效發揮作用。 
3）將離心管放入煮沸的水浴中，時間恰為40秒。 
4）用微量離心機于室溫以12 000g離心10分種。 
5）用無菌牙簽從微量離心管中去除細菌碎片。 
6）在上清中加入40μl 5mol/L乙酸鈉（pH5.2）和420μl異丙醇，振蕩混勻，于室溫放置5分鐘。 
7）用微量離心機于4℃以12 000g離心5分種，回收核酸沉淀。 
8）小心吸去上清液，將離心管倒置于一張紙巾上，以使所有液體流出。再將附于管壁的液滴除盡。除去上清的簡便方法是用一次性使用的吸頭與真空管道相連，輕緩抽吸，并用吸頭接觸液面。當液體從管中吸出時，盡可能使吸頭遠離核酸沉淀，然后繼續用吸頭通過抽真空除去附于管的液滴。 
9）加1ml 70％乙醇，于4℃以12 000g離心2分鐘。 10）按步驟8）所述再次輕輕地吸去上清，這一步操作要格外小心，因為有時沉淀塊貼壁不緊，去除管壁上形成的所有乙醇液滴，打開管口，放于室溫直至乙醇揮發殆盡，管內無可見的液體（2－5）分鐘。 11）用50μl含無DNA酶的胰RNA酶（20μg/ml）的TE(pH8.0)溶解核酸稍加振蕩，貯存于-20℃。 注：當從表達內切核酸酶Ａ的大腸桿菌株（endA+株，如HB101 ）中小量制粒尤其DNA時，建議舍棄煮沸法。因為煮沸步驟不能*滅活內切核酸酶Ａ，以后在Mg 2+存在下溫育（V中用限制酶時）質粒DNA可被降解。 在上述方案的步驟9）之間增加一步，即用酚：氯仿進行抽提，可以避免這一問題。

（二）質粒DNA小量制備的問題與對策
裂解和煮佛法都極其可靠，重復性也很好，而且一般沒有會么麻煩。多年來，在我們實驗室中日常使用這兩種方法的過程中，只碰到過兩個問題： 
1）有些工作者進行小量制備時，有時會發現質粒DNA不能被限制酶所切割，這幾乎總是由于從細菌沉淀或從核酸沉淀中去除所有上清液時注意得不夠。大多數情況下，用酚：氯仿對溶液進行抽提可以去除小量備物中的雜質。如果總是依然存在，可用離心柱層析注純化 DNA。 ELISA試劑盒
2）在十分偶然的情況下，個別小時制備物會出現無質粒DNA的現象。這幾乎肯定是由于核酸沉淀顆粒已同乙醇一起被棄去。