實驗原理受體細胞經過一些特殊方法如化學試劑法的處理后，細胞膜的通透性發生了暫時性的改變，成為能允許外源DNA分子進入的感受態細胞。進入受體細胞的DNA分子通過復制，表達實現遺傳信息的轉移，使受體細胞出現新的遺傳性狀。將經過轉化后的細胞在篩選培養基中培養，即可篩選出轉化子(即帶有異源DNA分子的受體細胞)。
CaCl2法的基本原理：細菌處于0℃，CaCl2低滲溶液中，細胞膨脹成球形，外源DNA形成抗DNA酶的羥基-鈣磷酸鹽混合物黏附于細胞表面，經短時間42℃熱激處理，促進細胞吸收DNA復合物。將細菌放置在非選擇性培養基中保溫一段時間，促使在轉化過程中獲得的新的表型，如氨芐青霉素耐藥（Ampr）得到表達，然后將此細菌培養物涂在含Amp的選擇性培養基上，倒置培養過夜，可獲得細菌菌落。
轉化(Transformation)是將外源DNA分子引入受體細胞，使之獲得新的遺傳性狀的一種手段，它是微生物遺傳、分子遺傳、基因工程等研究領域的基本實驗技術。
一、材料
pUC19質粒，大腸桿菌感受態，1.5ml塑料離心管，離心管架，
1000 ul、200ul槍頭，9cm培養皿，一次性濾膜（0.22um），大量碎冰
二、設備
微量移液器(2μl,200μl,1000μl)，高壓蒸汽消毒器(滅菌鍋)，培養箱，恒溫水浴鍋，恒溫搖床，離心機 超凈工作臺，雙蒸水器，冰箱等。
三、試劑準備
LB固體培養基
LB液體培養基
氨芐青霉素（apm）：無菌水配置成100mg/ml溶液，用濾膜抽濾，-20℃保存
滅菌雙蒸水ddH2O
四、實驗操作
（1） 平板的制備：LB固體培養基中加入Amp (100μg/ml)，轉化反應前一天，倒置平板，保存。
（2） 分別用2個100µl感受態細胞懸液(如是冷凍保存液，則需化凍后馬上進行下面操作：
*組，質粒DNA組：2 µl pUC19質粒DNA +100µl感受態細胞懸液
第二組，空白對照組，2ul無菌水＋100µl感受態細胞懸液
（3） 將以上各樣品輕輕搖勻，冰上放置20-30min，于42℃水浴中保溫90s，然后迅速冰上冷卻2min
（4） 立即向上述管中分別加入0.4ml LB液體培養基（在超凈工作臺操作，不需要在冰上），使總體積到0.5ml，搖勻后于37℃振蕩培養約30-60min，使受體菌恢復正常生長狀態，并使轉化體表達抗生素基因產物(Ampr)。
（5） 將培養液以5000rmp離心2min，在超凈工作臺取各樣品培養液0.1ml在平板上涂布，分別接種于含抗菌素LB平板培養基上（做好標記，日期），涂勻。
（6） 在菌液*被培養基吸收后，培養皿倒置于37℃培養箱中過夜(12-16小時)，
觀察轉化子出現的情況，待菌落生長良好而又未互相重疊時停止培養。（子科生物技術部編輯）