一、 細胞培養支原體污染來源及主要支原體種類
支原體（Mycoplasma）是一種大小介于細菌和病毒之間（0.1 - 0.6μm），沒有細胞壁、并獨立生活原核生物，形態呈高度多形性，呈圓形、絲狀或梨形。由于支原體直徑較小，進行除菌過濾是，約1%的支原體可以直接穿過常規的0.22μm的微孔除菌濾膜，造成細胞的支原體污染。支原體污染的來源包括：（1）工作環境的污染，實驗器材帶來的污染；（2）操作者本身的污染（一些支原體在人體是正常菌群）；（3）已受污染的培養基、血清，或用來制備細胞的原始組織或器官的污染；（4）污染支原體的細胞造成的交叉污染。
目前，已發現的支原體品種有100多種，但根據國內外相關研究發現，大約有二十多種支原體能污染細胞，有的細胞株可以同時污染兩種以上的支原體。以下13種支原體污染在全部支原體污染中所占比例超過99%。（1）M. orale、（2）M.Arginini、（3）M.Hyorhinis、（4）A.Laidlawii、（5）M.Fermentans、（6）M. salivarium、（7）M.pirum、（8）M. hominis、（9）M. agalactiae、（10）M.bovis、（11）M. buccale、（12）M. arthritidis、（13）M. pulmonis。其中尤其是前四種：M.orale（口腔支原體）、M.arginini（*支原體）、M.hyorhinis（豬鼻支原體）和A.laidlawii（萊氏無膽甾原體）所占污染比例超過95%，前8種占比超過98%。
二、 支原體污染對細胞培養的危害
1. 支原體污染的普遍性
支原體污染是細胞培養領域遇到的性問題，據文獻報道，綜合美國食品*（FDA）、美國模式菌種收集中心(ATCC)等機構收到的相關數據，世界各國細胞系支原體污染的平均比例為30-60%。該數據未統計中國大陸的數據，但可以確定，大陸地區的支原體污染比例與此相當，或更嚴重。
表1.部分國家及機構細胞系污染數據統計
Cell Line | USA-ATCC | USA-FDA | Germany-DSM | Argentina | Japan-IFO |
Rate | 14% | 15% | 15% | 65% | 80% |
2. 支原體污染的危害
根據已發表的支原體污染研究文獻，支原體污染細胞后，幾乎能影響每一個細胞參數。
1） 支原體污染可能導致細胞染色體的異常和損傷，改變細胞的代謝、生長、形狀、附著。
2） 支原體影響被污染細胞的基因表達。相關研究表明，支原體污染的細胞系與對照組比較，有多達200個基因表達差異達2倍以上。
3） 導致MTT等細胞毒性實驗結果嚴重錯誤。支原體對MTT有額外還原作用。
4） 支原體污染能耗盡營養物，促進代謝積累，重度支原體污染導致pH改變。
5） 誘導或抑制細胞因子表達，并改變培養細胞的代謝、增殖特征及形態。支原體污染可以直接影響L-arginine的代謝
6） 支原體污染可以誘導樹突狀細胞成熟，這對于開展人體免疫細胞的*的影響將是災難性的。
3. 支原體污染的隱蔽性
支原體大小約0.1 - 0.6微米，體積比病毒稍大，輕度到中度的支原體污染不會明顯改變細胞培養液的渾濁度和pH值，也不會導致細胞形態或生長速度的明顯改變，所以科研人員很難及時發現體外培養的細胞已經被支原體污染，進而改變了基因表達譜，顯示虛假的實驗數據和實驗結果。通常情況下，如果不排除支原體污染因素，很多實驗結果往往缺乏說服力。2013年，*期刊《Nature》明確要求，在涉及細胞培養的科研工作中，必須進行支原體檢測，并排除其影響。
三、 支原體污染檢測
1. 支原體檢測方法概述
支原體污染嚴重干擾細胞實驗結果，檢測有無支原體污染的方法較多，可以根據自身實驗室條件、檢測方法便捷性等作出選擇。
①電子顯微鏡或相差顯微境觀察。用掃描電鏡或透射電鏡，直觀觀察支原體形態。或者在細胞培養瓶內預置蓋玻片，接種細胞在蓋玻片上，培養24小時后取出用油鏡觀察。如有支原體，因支原體與細胞在不同平面，可發現支原體呈現暗色顆粒裝。缺點：設備要求嚴格，檢測成本高，不適合普通實驗室日常常規檢測。
②DNA熒光染色法，利用支原體沒有細胞膜（壁）的特性，用熒光染料Hoechst 33258染色， Hoechst 33258能與支原體DNA結合著色，在熒光顯微鏡下觀察，呈現綠色小點。缺點：靈敏度太低，當檢測成陽性時，細胞經常已經嚴重污染。
③固體培養法，用支原體培養基大量增殖支原體，是相對可靠的支原體檢測技術。缺點：耗時長，需要數周時間才能得到結果，不適合作為細胞培養液中支原體污染的快速檢測。此外，該方法不能檢測豬鼻支原體，因為豬鼻支原體不能在固體培養基上形成可見的菌落，豬鼻支原體（M.Hyorhinis）約占所有支原體污染的20-50%。
④PCR法，提取細胞培養液，提取支原體，制備樣品，根據支原體高度保守的16SrRNA序列設計引物（避免真核細胞或細菌DNA干擾），設置陰性，陽性對照，擴增產物經電泳后成像觀察，可識別已發現的幾乎全部100余種支原體。
⑤Quick Cell快速檢測法，拓撲酶環化支原體DNA，在根據高保守區設計的引物引導下，采用特殊等溫DNA擴增酶，61℃條件下，連續滾環式擴增支原體DNA 60分鐘，根據有無支原體污染，隨著擴增進程可目視實驗結果。
⑥化學發光法，裂解支原體后，有底物情況下，支原體特異性的酶，能將ADP轉化成ATP。ATP參與熒光素酶（Luciferase）催化底物熒光素（Luciferin）產生光的過程，所以可以通過催化底物熒光素導致的生物發光（Bioluminescence）信號來判別支原體DNA存在與否。
綜上所述，在多種支原體檢測方法中，受實驗條件、實驗時長、便捷性等因素限制,①-④僅在很少情況下得到應用。實際科研工作中，應用的是 ⑤ PCR支原體檢測法；⑥Quick Cell快速支原體檢測法；⑦化學發光支原體檢測法。
2. 幾種zui常用支原體檢測方法比較
檢測方法 | Quick Cell快速檢測法 | 化學發光法 | PCR法 |
檢測原理 | 環化DNA等溫連續擴增 | 支原體特異性酶檢測 | 根據支原體DNA序列設計引物進行PCR擴增 |
實驗條件 | 恒溫水浴或PCR儀 | -80℃超低溫冰箱，多功能酶標儀或發光檢測儀 | 常規PCR儀，電泳儀，成像系統 |
靈敏度 | 比PCR法高1-2個數量級 | 與PCR法相當 | 較靈敏 |
檢測時長 | 1小時 | 25分鐘 | 2-3小時 |
定性/定量 | 定性 | 定性，半定量 | 定性，半定量 |
污染
假陽性率 | 低 | 低 | 高 |
引物
假陽性率 | 零 | 零 | 高 |
樣品制備 | 直接取上清，不需制備 | 需要樣品制備 | 離心 |
檢出
正確率 | >99% | >99.9% | >80% |
綜合評價 | 1）簡便、快速，任何實驗室均可操作；2）擴增不受細胞代謝產物影響，高準確率 | 1）快速，準確；2）有特定設備要求，物流儲存條件高。 | 1）較高的檢出準確率；2）PCR反應易受培養基成分抑制，產生假陰性；3）需制備樣品。 |
代表性
產品 | Quick Cell 快速支原體檢測（李記生物, CAT:C4056L1060） *本產品由細胞專家李記生物*研發 | Quick Cell 支原體發光法檢測試劑盒（李記生物,CAT:C4056L1065） MycoAlert Plus Mycoplasma Detection Kit (Lonza, CAT: LT07-710) | Quick Cell 支原體PCR檢測試劑盒（李記生物,貨號: C4056L1062） Lookout Mycoplasma Detection Kit.（Sigma貨號:MP0035） |
3. 支原體檢測策略及方法選擇
①單個方法獨立檢測支原體（正確檢出率80%-99.9%）
就單個檢測方法及原理而言，“化學發光法”擁有zui高的正確檢出率（99.9%），用時zui短，應為方法?？蛇x產品為Lonza公司的MycoAlert Plus Mycoplasma Detection Kit (CAT:C4056L1065，價格：約9800元/100次），或李記生物公司的“Quick Cell 支原體發光法檢測試劑盒（CAT:C4056L1065，價格：1250元/50次）”。
若受實驗室條件所限沒有配備化學發光檢測儀，或多功能酶標儀，建議選擇“Quick Cell快速檢測法”，該方法1小時出結果，避免了PCR法因細胞代謝產物抑制PCR反應導致的假陰性出現，正確檢出率大于99%，對設備幾乎無要求，可目測結果。產品可選李記生物公司的“Quick Cell支原體快速檢測試劑盒（CAT:C4056L1060，價格：1250元/50次）”。
②多原理支原體檢測策略
市場在售的所有支原體檢測試劑盒，目前沒有一種可以檢出全部可能的支原體污染，如果從事細胞治療、進行干細胞培養、生產血清、*、培養液工作的科研人員，強烈建議選擇兩種以上檢測方法，確保支原體正確檢出率達到100%，避免關鍵實驗不必要的損失。
細胞培養支原體污染是個普遍性問題，污染來源很多，根據國外生物實驗室的規范做法，實驗室的支原體檢測要定期進行，一般一個月做一次支原體檢測，可以*時間確定支原體污染情況，顯著降低或避免支原體污染對細胞培養相關實驗的影響。
四、 支原體污染去除
1. 支原體污染預防
根據可能的支原體污染來源，在體外細胞培養過程中，要嚴格控制環境污染；嚴格實驗操作；細胞培養基和實驗器材、耗材要保證無菌；在不影響實驗結果的前提下，可在細胞培養基中加入適量的特定抗生素；發現支原體污染后，要清除支原體，防微杜漸。
2. 支原體污染的去除及預防
因為支原體沒有細胞壁，一般用于細胞壁合成的抗生素對支原體沒有作用，如*、*多粘菌素（polymycin）、*、磺胺藥物普遍沒什么效果。對支原體zui有抑制活性及常用于支原體去除的抗生素是四環素類、大環內酯類及一些*。在低濃度時，這些抗生素不會產生耐藥性，且對哺乳動物細胞的毒性較小。四環素和大環內酯能結合30S和50S核糖體亞基，從而抑制支原體蛋白質合成，喹諾酮抑制DNA旋轉酶。因此可以在細菌DNA復制及蛋白質合成兩個層面上抑制細菌生長，明顯增強除菌效果。
3. 支原體去除試劑選擇
選擇支原體去除試劑需要注意幾個關鍵幾點： ①細胞毒性小，毒性大的試劑在去除支原體的同時，會殺死細胞； ②支原體去除效果，選擇廣譜試劑，去除多種支原體，以及細菌，真菌等； ③操作簡便，沒有二次污染；要考慮操作使用是否方便，因為如果使用起來比較麻煩，首先是費時費力，另外可能會帶來二次污染。目前市場上有多種支原體去除&預防試劑可選。包括李記生物的Quick Cell支原體預防/去除試劑，美國GenDEPOT公司的Cellmaxin，羅氏公司的BM-Cyclin，Biolnd的BIOMYC-1,BIOMYC-2,BIOMYC-3，以及Invivogen 公司的Plasmocin™ prophylactic和Plasmocin™ treatment 等。
Quick Cell支原體預防及去除試劑和Cellmaxin都是從蛋白和DNA兩個層面去除支原體，抗菌譜廣。不同在于Quick Cell的使用者可以靈活選擇單獨或聯合使用兩種成分，分別或同時在蛋白或DNA層面去除支原體污染，細胞毒性更小。作用周期1-2周，支原體去除率大于92%。去除預防兼顧
BM-Cyclin包含泰妙菌素（BM-Cyclin 1）和二甲胺四環素（BM-Cyclin 2）兩種成分，抑制支原體及細菌生長，去除培養細胞中已感染的支原體。適用于多種培養細胞，無明顯副作用，又不影響細胞本身的代謝，而且處理過的細胞不會重新感染支原體。BM-Cyclin需聯合使用，作用周期2周，可消除80%以上的支原體。不確定能否預防。
BIOMYC-1基于抗生素泰妙菌素，由真菌pleurotus mutilus 產生。 BIOMYC-2基于二甲胺四環素，四環素衍生物。此兩種抗生素溶液通常按先后聯合使用2－3次循環約一周以上，可取得良好的效果。BIOMYC-3 基于抗生素*，屬于*類。許多支原體被證明對BIOMYC-3敏感，需要根據支原體種類使用。處理周期2周，能去除90%的支原體。是否可以預防支原體目前還不能確定。
Plasmocin™ prophylactic和Plasmocin™ treatment也是兩種抗生素的混合物，包含兩個針對支原體的有效成分，作用于蛋白質合成和DNA復制階段，對許多細菌和真核細胞則沒有影響。作用周期2周，去除效率未知。有兩個濃度包裝，去除用高濃度，預防用低濃度。
