MTT技術服務

1、 MTT服務流程

① 收集對數生長期細胞并計數;

② 接種細胞;配成單細胞懸液，接種于96孔板，接種密度為每孔103-104;

③ 培養細胞：5%CO2，37℃孵育，培養1天～5天(需根據試驗目的和要求決定培養時間);

④ 加入MTT溶液，繼續孵育4 h～6h;

⑤ 終止培養，去除培養上清液;

⑥ 加入DMSO，脫色搖床振蕩10min，使結晶物充分融解;

⑦ 酶聯免疫監測儀選擇490nm或570nm波長，測定各孔光吸收值;

⑧ 記錄結果，繪制細胞生長曲線。

2、 MTT原理

3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽{3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenylt-

etrazolium bromide，MTT｝，商品名為噻唑藍，是一種黃顏色的染料。MTT比色法是一種檢測細胞存活和生長的方法，其檢測原理為活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性MTT還原為水不溶性的藍紫色結晶甲瓚(Formazan)并沉積在細胞中，而死細胞無此功能。二甲基亞砜(DMSO)能溶解細胞中的甲瓚，用酶聯免疫檢測儀在490nm或570nm波長處，在酶聯免疫監測儀上測定各孔光吸收值。在一定細胞數范圍內，MTT結晶形成的量與細胞數成正比，根據測得的吸光度值(OD值)來判斷活細胞數量，OD值越大，細胞活性越強(如果是測藥物毒性，則表示藥物毒性越小)(圖1)。該方法已廣泛用于一些生物活性因子的活性檢測、大規模的抗腫瘤藥物篩選、細胞毒性試驗以及腫瘤放射敏感性測定等。

圖1 MTT檢測原理

3、 MTT應用

① 細胞增殖程度的測定;

② 細胞活性的測定;

③ 藥物或其他因素對培養細胞的毒性測定;

4、 MTT比色法原則

① 設空白對照;

② 培養細胞的濃度應合適：通常情況下每孔103～104個;

③ 培養細胞的生長狀態應合適;

④ 避免胎牛/小牛血清干擾：一般選小于10%的胎牛/小牛血清的培養細胞，顯色后盡量清洗培養基;

⑤ 吸光度范圍以0～0.7為宜，超出范圍后不是線性關系被破壞;

⑥ 加入DMSO后應在在脫色搖床上振蕩10～15min，然后測吸光值;

⑦ 每孔鋪的細胞數目應均勻一致。

5、 MTT所需材料

① MTT試劑：

a: 0.5% MTT溶液(5mg/ml)

b:胎牛血清或小牛血清;

c: RPMI 1640培養基;

d:DMSO;

e:PBS緩沖液;

f:*消化液;

② MTT耗材：

a:待檢樣本(培養細胞);

b:96孔培養板;

c:無菌的tip頭;

③ 儀器：

a:濕式CO2培養箱(圖2);

b:酶聯免疫檢測儀(圖3);

c:脫色搖床;

d:臺式離心機

圖2濕式CO2培養箱 圖3酶聯免疫檢測儀

6、 材料要求

① 避免細胞污染;

② 呈色后盡量清除培養基，尤其是清除胎牛/小牛血清;

③ 實驗材料涉及危險品，loogene公司不予服務;

④ 待檢細胞盡量新鮮，待測細胞生長狀態良好;

⑤ 提供盡量詳細的實驗背景材料。

7、 實驗周期

① 1-10個樣本，7個工作日

② 10-100個樣本，10個工作日

③ 100個樣本以上，20個工作日

8、 提供結果

完整的實驗操作步驟、吸光度值、細胞生長曲線(圖1)、MTT統計分析(圖4)等結果。

圖4 MTT統計分析