培養基成纖維細胞的排除方法研究

．培養基機械刮除法：

　　是用不銹鋼絲末端插有橡膠刮頭（用膠塞剪成三角形插以不銹鋼絲）、或裹少許脫脂棉制成，裝入試管中高壓滅菌后備用（也可用特制電熱燒灼器刮除）。刮除程序為：

　　（）標記：鏡下觀察，用不脫色筆在培養瓶皿的背面圈下生長腫瘤細胞的部位；

　　（2）刮除：棄掉培養液，把無菌膠刮伸入瓶皿中，肉眼或顯微鏡窺視下，刮除無標記空間；

　　（3）用Hanks液沖洗一兩次，洗除被刮掉的細胞；

　　（4）注入培養液繼續培養，如發現仍有成纖維細胞殘留，可重復刮除至*除掉為止

2．反復貼壁法：

　　根據腫瘤細胞比成纖維細胞培養基貼壁速度慢的特點，并結合使用不加血清的營養液，把含有兩類細胞的細胞懸液反復貼壁，使兩類細胞相互分離，操作方法與傳代相同。

　　（）待細胞生長達一定數量后，倒出舊培養液，用消化后，Hanks 沖洗2次，加入不含血清的培養液，吹打制成細胞懸液；

　　（2）取編號為此A、B、C三個培養瓶；首先把懸液接種入A培養瓶中。置溫箱中靜止培養5～20分鐘后，輕輕傾斜培養瓶，讓液體集中瓶角后慢慢吸出全部培養液，再接種入B培養瓶中后；向A瓶中補充少許*培養液置溫箱中繼續培養；

　　（3）培養B瓶中細胞5～20分鐘后，接處理A的方法，把培養液注入C培養瓶中；再向B瓶中補加*培養基。

　　當三個瓶內都含有培養液后，均在溫箱中繼續培養。如操作成功，次日觀察可見A瓶主要為成纖維細胞，B瓶兩類細胞相雜，C瓶可能主要為癌細胞。必要時可反復處理多次，直至癌細胞純化為止。

3．消化排除法：

　　此法曾用于乳癌細胞的培養，具體程序是：

　　（）先是用0.5%和0.02％EDTA（：）混合液漂洗培養細胞一次，然后再換成新的混合液繼續消化，并在倒置顯微鏡下窺視和不時搖動培養瓶，到半數細胞脫落下來后，便立即停止消化；

　　（2）把消化液吸入離心管中，離心去上清，吸入另瓶中，加培養液置溫箱中培養；向原瓶內也補加新的培養液繼續培養。用此法處理后，成纖維細胞比腫瘤細胞易先脫落。經過幾次反復處理，可能把成纖維細胞除凈。

4．膠原酶消化法：

　　本法是利用成纖維細胞對膠原酶較為敏感的特點，通過消化進行選擇。

　　（）可用0.5mg/ml的膠原酶消化處理，邊消化邊在倒置顯微鏡下窺視，當發現成纖維細胞被除掉后，即終止消化；

　　（2）用Hanks洗滌處理一次后，更換新培養液，繼續培養，可獲純凈腫瘤細胞。如成纖維細胞未被除凈，可再次重復。

5．其它方法：

　　有人發現聚丙烯酰胺有抑制成纖維細胞培養基基生長的作用；也有人用聚蔗糖制備成比重.025～.085的密度梯度離心液，加入細胞懸液后，在23℃中800g離心0分種。在比重.025～.050層為成纖維細胞，在比重.050～.085層為上皮細胞，再經過分離進行培養。zui近也有人應用特殊化學物如SOD抑制成纖維細胞生長的方法。